Introducción de la practicas. Conocimientos previos. Punto de partida. ¿Qué sabes de lo que comes?
NUTRIENTES
1.- Determinación de las diferentes elementos con su reactivo.
Se coloca en cuatro gradillas con cuatro tubos, en cada tubo se introducirá diferentes elementos con la finalidad de añadir los siguientes reactivos y determinar que reactivo reacciona con cada elemento
Lugol
Reactivo de Fehling
Biuret
Sudán III
–
Los resultados que obtendremos:
El reactivo LUGOL nos determinara la presencia de almidón virando al color Azul Violeta.
El reactivo de FEHLING nos indicara la presencia de glúcidos al tener poder reductor virando a color Rojo Ladrillo.
El reactivo de BIURET nos determinara la presencia de proteínas virando al color Violeta.
El reactivo de Sudan III nos determinará la presencia de lípidos virando color Rojo Ladrillo.
CLASE DE MAÑANA
ALIMENTOS
Una vez que sabemos que tipo de reactivos reaccionan con los diferentes nutrientes. Vamos a comprobar y a responder a la pregunta ¿Sabes lo qué comes?
Para ello vamos hacer el mismo procedimiento que el paso anterior «Determinación de nutrientes».
Ahora vamos a determinar de los diferentes alimentos de que estan compuestos:
Leche
Clara de huevo
Yema de huevo
Ralladura de Patata
Jamón cocido
Jamón serrano
Los resultados obtenidos son:
La Leche reacciona con el reactivo de FEHLING (Vira a color Rojo Ladrillo) por su contenido en glúcidos.
La Clara de Huevo reacciona con el reactivo de BIURET (Vira a color Violeta) por su contenido en proteínas.
La Yema de Huevo reacciona con el reactivo FEHLING (Vira a color Rojo Ladrillo) por su contenido en glúcidos.
La Ralladura de patata reacciona con el reactivo de LUGOL (Vira a color Azul Violeta) por su contenido de almidón.
El Jamón cocido reacciona con el reactivo de LUGOL (Vira a color Azul Violeta) por su contenido de almidón.
El Jamón serrano reacciona con el reactivo de SUDAN III (Vira a color Rojo Ladillo) por su contenido en lípidos.
Comenzamos la visita subiendo a al techo de la cabina situada en al campus universitario, donde se toman muestras de PM10, PM2.5 y material particulado sedimentable. También pudimos ver cómo se recogen la muestras que van a ser analizadas:
Además, entramos en la cabina donde están instalados los equipos para la medición en continuo de material particulado, SO2,
NOX, CO, O3 y contaminantes orgánicos:
Más tarde, visitamos el laboratorio donde se preparan las muestras recogidas en las cabinas para su análisis. Pudimos comprobar el cambio de color que toman los filtros muestreados:
Observamos las muestras de material paticulado sedimentable en el microscopio. Al ampliar la imagen distinguimos varios tipos de insectos, partículas de mineral, polen e incluso pistilos:
Conocimos las medidas de seguridad que se toman para poder trabajar con los ácidos en la sala de digestiones:
También vimos los equipos con los que se analizan más de 50 elementos y parámetros del material particulado:
Por último, nos reunimos para sacar conclusiones. Hablamos sobre cómo la calidad del aire que respiramos influye directamente en nuestra salud y propusimos pequeños hábitos que podemos cambiar en nuestro día a día para ayudar a mejorar la calidad del aire de Huelva.
Marismas del Odiel es uno de los parajes naturales protegidos en la provincia de Huelva:
Empezamos en el Centro de Interpretación de Calatillas:
Y nos dirigimos a la zona de máxima protección del Paraje, pasando por las salinas, zona de marisma transformada para uso industrial de extracción de sal:
Llegamos a la zona restringida, porque es donde anidan los flamencos, cernícalos… y el aguila pescadora, que está incubando huevos en el nido plataforma.
Lo primero, distribuirnos en grupos:
Y vamos hacia la zona donde se encuentra el nido del águila pescadora (Pandion haliaetus):
Y nos volvemos a dividir para ir a ver el nido con los telescopios:
Este es un nido de cernícalo, pero no está ahora usándose…
Y el del águila pescadora:
Actualmente hay 7 parejas que anidan en el paraje.
Nos disponemos a mirar por los telescopios:
También vemos los flamencos, que con los telescopios se ven mucho más cerca…
Podemos ver el nido y la cabeza del aguila pescadora:
Cambiamos para que pueda ir el otro grupo:
Ahora comenzamos con juegos:
Y trabajamos algo de matemáticas…
Y todos estos números son para hacer un climograma:
Vemos que nos ha salido un climograma del clima mediterráneo.
Ahora toca descansar y tomar el bocata…
y también algo de artrópodos, nos encontramos con una escolopendra (Filo Artrópodos, Subfilo Myriapoda, Clase Chylopoda, Orden Scolopendromorpha; Scolopendra cingulata):
Ahora vamos a ver donde se ubicaron los pollos de águila cuando se trajeron de Alemania, Escocia y Finlandia:
La porte posterior, por donde salían a volar:
Ahora les toca a los alumnos investigar el lugar:
Y a las profes…
Continuamos con las actividades:
Ahora se trata de responder preguntas por grupos y…
los que aciertan vienen a coger su pescaito, como si fueran aguilas pescadoras!!!
Y ya de vuelta al bus:
Entrega de premios a los equipos ganadores!!!
AGRADECER A LOS INVESTIGADORES DE MARISMAS DEL ODIEL TODO LO QUE HAN ENSEÑADO A NUESTROS ALUMNOS EN EL MEDIO!!!!
Vídeo realizados por los alumnos para poder optar a ir a anillar a los pollos del águila pescadora:
Se van a transformar bacterias de E. coli K-12, para ellos mediante un choque térmico se les va a introducir el plásmido pGLO.
Los estudiantes han realizan un sencillo procedimiento para transformar bacterias con un gen que codifica la síntesis de una proteína denominada GFP (Green Fluorescent Protein). La fuente natural de este gen es una medusa fosforescente llamada Aequorea victoria, en la que la GFP es la responsable de que la medusa brille o emita fluorescencia en laoscuridad. Después de la transformación, las bacterias expresan el gen de la medusa y sintetizan la proteína, lo que les permite emitir un color verde brillante cuando son expuestas a luz ultravioleta. que contiene, además de la proteína GFP, el gen para la producción de betalactamasas, lo que hace a la bacteria portadora de este gen ser resistente a la ampicilina. Las betalactamasas son enzimas producidas y excretadas por las bacterias que contienen estos plásmidos. Las betalactamasas inactivan la ampicilina presente en el agar LB, permitiendo el crecimiento bacteriano. Únicamente las bacterias transformadas con el plásmido y que expresan las betalactamasas sobrevivirán en las placas que contienen ampicilina. Sólo un reducido porcentaje de células captan el plásmido. Las células que no se transforman no pueden crecer en las placas con ampicilina.
La expresión génica está estrechamente regulada en todos los organismos para permitir la
adaptación a diferentes condiciones y para evitar una superproducción de proteínas innecesarias. Los
genes implicados en la degradación de los diferentes nutrientes son un buen ejemplo de genes con
una alta regulación. Por ejemplo, la arabinosa es una fuente de energía y de carbono para la bacteria.
Los genes bacterianos que codifican las enzimas para degradar la arabinosa no se expresan cuando
no hay arabinosa en el medio. Pero cuando hay arabinosa, los genes se activan, volviéndose a
inactivar cuando se agota la arabinosa.
La arabinosa inicia la transcripción de estos genes induciendo la unión de la ARN polimerasa. En el
plásmido modificado genéticamente pGLO, algunos de los genes implicados en la degradación de la
arabinosa han sido sustituidos por los genes que en la medusa codifican la proteína GFP. Cuando las
bacterias transformadas con el plásmido pGLO están creciendo en presencia de arabinosa, el gen GFP
se activa y las bacterias emiten un color verde brillante cuando se exponen a luz ultravioleta.
En ausencia de arabinosa en el medio, el gen GFP permanece inactivado y las colonias bacterianas
son de color blanco.
Primer día.
Se comienza aprendiendo a pipetear con las pipetas pasteur:
Se revisan los protocolos:
Todo desinfectado y preparado:
Se comienza a preparar el LB Agar :
Para preparar el agar, añadir 500 ml de agua destilada a un matraz Erlenmeyer de 1 litro. Añadir el
contenido del paquete de agar LB. Agitar el matraz para disolver el agar, y calentar hasta ebullición en
el microondas. Volver a agitar y calentar unas tres veces más hasta que el agar se disuelva, teniendo
cuidado de dejar enfriar el matraz antes de agitarlo, para evitar que el medio caliente salte a la mano.
Mientras tanto se prepara la Arabinosa, con la solución de transformación y la ampicilina, antibiótico necesraio para controlar si se ha producido la transformación, al igual que la arabinosa es necesaria para que se pueda expresar el gen que se va a transformar.
La arabinosa se prepara con una pipeta estéril, añade 3 ml de la solución de transformación en el vial para rehidratar el azúcar.
La ampicilina también está envasada en un pequeño vial y deshidratada. Con otra pipeta estéril,
añade 3 ml de la solución de transformación al vial para rehidratar el antibiótico (Se utiliza la solución de transformación porque está estéril)
Se preparan, para después echárselo al medio de cultivo:
Cuando el agar se haya disuelto, se dejar enfriar hasta que el matraz se pueda tocar sin quemarse (50
ºC).
Se termina de rotular las placas:
Se comienza a preparar las placas con LB- Agar:
Posteriormente se aporta el antibiótico. Comenzamos a echar el LB Agar/ampicilina:
Y por último se aporta la arabinosa, para preparar las placas LB-Agar/Ampicilina/ Arabinosa:
Todas las placas preparadas:
Y se guardan en la estufa para que solidifique el medio de cultivo:
2º Día
Ya tenemos las placas petri preparadas para sembrar. De manera que lo que hay que hacer es rehidratar E. coli que se encuentra liofilizada:
Con una pipeta estéril, rehidratar el liofilizado de E. coli HB101 añadiendo 250 ml de la solución de
transformación en el vial. Tapar el vial y dejar la suspensión 5 minutos a temperatura ambiente. Agitar el vial antes de añadirlo a las placas de LB.
Preparados para la rehidratación:
Una vez rehidratada E. coli, se siembran las placas por cuadrantes:
Las placas sembradas se incuban a 37 ºC:
El resto de las placas se recogen
Y se guardan en el frigorífico:
3º Día
Empezamos ensayando para coger el plásmido:
Se prepara para el choque térmico:
Vemos que nos han crecido E. coli, que se caracteriza por presentar colonias de color crema, redondas y de bordes lisos.
Prepración del plásmido:
Con una pipeta estéril añadir 250 ml de la solución de transformación en el vial que contiene el
plásmido pGLO liofilizado. La cantidad de ADN es tan pequeña que puede parecer que el vial está
vacío.
Todo listo para comenzar. Lo primero se añade 1 ml de la solución de transformación (CaCl2) y 1 ml del caldo LB en los tubos eppendorf de 2 ml.
Etiquetamos los tubos eppendorf:
(+): con plásmido
(-): sin plásmido
Comprobamos si presenta fluorescencia el plásmido…
Todos listo!!!
Se introduce E. coli, en los dos tubos eppendorf:
Y posteriormente se coge el plásmido con el asa estéril y se coloca en el tubo eppendorf (+):
Choque térmico:
– Incubar los tubos en hielo 10 minutos.
– Llevar los tubos en la gradilla
al baño ya preparado a 42 ºC, e introducirlos
allí durante 50 segundos exactos.
Cuando se encuentra a la temperatura adecuada:
Se introduce durante 50 segundos:
Asegurándonos de que se encuentre los tubos en el agua caliente.
– Llevar de nuevo los tubos al hielo. El cambio de hielo al baño y
viceversa debe hacerse con rapidez. Dejar los tubos en el hielo 2 minutos.
Rotulamos las placas poniendo las (+) y (-)
Ya solo queda sembrar:
Todo listo!!! se meten en la estufa a 37º C y a esperar 24 horas:
Lo que nos debería salir:
Último día: Resultados
Se aprecia que han crecido muchas colonias de E. coli no transformadas en el medio de LB-Arabinosa:
En el medio del antibiótico, y que no ha sido transformadas no crece ninguna colonia
Y por último observamos que se han transformado las bacterias, ya que crecen en el medio con antibióticos. Pero para que se exprese el gen debe haber arabinosa en el medio
Se han celebrado las Olimpiadas de Geología (2019), en la que ha quedado ganadora la alumna del IES San Sebastían Martha Blanco, y entre los diez mejores Javier Pineda y Alba Camacho.
Entrega de diplomas:
En Huelva:
En Cáceres, donde se celebró la final:
Reconocimiento del Centro a los alumnos participantes en las Olimpiadas y a nuestra ganadora Martha Blanco.
Finalistas:
Javi
Alba
Y la ganadora: Martha
Todos los participantes:
Y con todos los posibles nuevos participantes para los próximos años:
Y nuestro fantástico curso de 1º de Bachillerato!!!
Científicos de Marismas del Odiel han impartido una conferencia de la presencia del Aguila Pescadora en las marismas del Odiel. En la que han explicado cómo han conseguido introducirla, después de que en los años 60 desapareciera del paraje.
Para tener más información de cómo se ha introducido el águila pescadora, mira los siguientes vídeos:
Se ha realizado una salida a Portugal para realizar estudios geológicos. Los alumnos que han realizado la práctica han sido de 2º de ESO y, tutorizados también, por 3 alumnos de 1º de Bachillerato que han ganado las Olimpiadas de Geología en Huelva (Febrero, 2019).
Las paradas se han realizado en la Playa de la Luz y la Playa de Salema.
Playa de la Luz:
Se ha realizado un recorrido, y se han visto distintos tipos de rocas.
Empezamos viendo rocas sedimentarias que se formaron hace 112 millones de año!!!
Utilizamos las brújulas para ver la orientación de los pliegues:
Se aprecian los estratos de las rocas sedimentarias:
También se aprecian fósiles de turritelas:
Continuamos la marcha:
Tenemos que llegar hasta el acantilado que se ve al final de la playa arenosa:
Continúan siendo rocas sedimentarias:
En la plataforma de abrasión se observan cantos que han sido erosionados por acción de las olas y corrientes.
Se vuelve a estudiar la dirección de los estratos:
En el acantilado se aprecia las diaclasas, que posteriormente caerán por acción del oleaje y formarán la plataforma de abrrsión.
En la plataforma encontramos basalto entre las rocas sedimentarias:
Esto quiere decir que cerca hubo un volcán!!! Así que continuamos la marcha:
Hasta que encontramos una brecha volcánica!!! Esto nos confirma que es una zona volcánica, que ha surgido después de las rocas sedimentarias.
Continuamos a la siguiente parada de la playa de Salema. Y también hay tiempo para estudiar organismos bentónicos que nos encontramos, como Astropecten sp., de manera que recordamos que pertenece al Filo de los Equinodermos y a la Clase de los Asteroideos.
Playa de Salema:
Por fin vemos las huellas de Dinosaurios!!!! Se han conservado en rocas sedimentarias
Por las huellas se sabe que era bípedo y de un tamaño considerable
Se ve claramente que estamos en rocas sedimentarias por los estratos que presentan.
También hay fósiles de grutas realizadas por anélidos gigantes:
Continuamos, después de comer, hasta el Cabo de San Vicente:
«En el IES San Sebastián se ha desarrollado, hoy 21 de Diciembre, en el marco del II Plan Estratégico de Igualdad del Centro, una actividad para visibilizar el papel de la mujer en el campo de la ciencia. La actividad fue promovida por el Departamento de Biología y Geología. Fue organizada por el alumnado de Cultura Científica de 1º de Bachillerato y participó todo el alumnado de 1º de Bachillerato (Ciencias, Ciencias Sociales y Humanidades). La actividad consistió en compartir un desayuno con varias mujeres que poseen una formación científica y desarrollan un trabajo vinculado al campo de la ciencia. Durante el mismo los alumnos y alumnas tuvieron la oportunidad de charlar sobre la experiencia de estas mujeres en su camino hacia sus actuales puestos de trabajo y de compartir inquietudes de los propios estudiantes en relación con este tema y con su propio futuro. También hubo un momento de revivir el papel de numerosas mujeres científicas, menos conocidas, en el desarrollo de distintas disciplinas.
Al término del desayuno, se eligieron los diseños ganadores de un concurso de “Diseño de Camisetas” en relación con la misma temática. Participaron como invitadas Carmen Moreno (Geóloga y profesora de Estratigrafía de la UHU), Mª Luisa Cordero (Bióloga y Directora del centro del IFAPA Punta Umbría), Reyes Sánchez (Ingeniera Industrial e Investigadora y profesora de la UHU), Esperanza Morillo (Química y Directora de Proyectos de Atlantic Copper), Beatriz Aranda (Ingeniera de Materiales y Vicerrectora de Ordenación Académica, Grado y Posgrado)».
Invitadas:
– Reyes Sánchez (Ingeniera Industrial e Investigadora y profesora de la UHU) – Mª Luisa Cordero (Bióloga y
(Jefa de INFAPA, Aguas del Pino)
– Esperanza Morillo (Química y Directora de Proyectos de Atlantic Copper)
– Carmen Moreno (Geóloga y Profesora de Estratigrafía de UHU)
– Beatriz Aranda (Ingeniera de Materiales y Vicerrectora de Ordenación Académica, Grado y Posgrado)
Se comenzó con una serie de preguntas a las invitadas:
– Nombre de una científica favorita
– Hobby
– Libro favorito
– Cosas realizadas de las que se sienten orgullosas
– Anécdota relacionada con la ciencia y el género
– Utensilio de trabajo
Con estas preguntas se realiza un juego en el que los alumnos de 1º de Bachillerato deben relacionar a nuestras invitadas con su profesión.
A continuación se continúa con el café:
Las Científicas se sientan con nuestros alumnos:
Continuamos con el concurso de camisetas diseñadas por los alumnos:
Dos camisetas ganadoras:
El Director del Centro y el Vicedirector agraden a nuestras invitadas su presencia y la charla con nuestros alumnos
Visitamos las salinas del Astúr en el Paraje Natural de los Enebrales, donde se encuentra una empresa de Acuicultura en la que se cultivan doradas y lubinas de forma semi-intensiva. Los alumn@s realizan las tareas de un acuicultor.
Llegamos temprano y vamos a ver la flecha del Rompido:
Llegamos a las salinas:
y nos comentan las tareas que se van a realizar.
Comenzamos con una vuelta de reconocimiento por las balsas
La vegetación típica de salinas, la salicornia, que es comestible y tiene un agradable sabor a mar.
La zona del comedero presenta una malla para evitar la depredación por las aves.
Se levanta la nasa de muestreo
Ha cogido una dorada
La balsa está cubierta por cuerdas para evitar que las aves se coman a los alevines.
Continuamos con el muestreo, ahora se va a hacer con cañas de pescar. Nos enseñan a utilizar la caña.
Y a pescar:
Se pesca la primera dorada!!!!
Se continua con la pesca y se coge otra dorada:
Hay que continuar trabajando, se analiza el estado externo de la dorada
y se continua haciendo la disección para estudiar la anatomía interna. Primero, nos explican cómo hacerlo y se indica por donde hay que hacer la incisión:
Todos a trabajar…
El hígado es lo primero que vemos
El intestino:
Continuamos, ahora vemos el bazo:
El corazón:
Terminamos de sacar la mayoría de los órganos
La siguiente tarea es el estudio de parámetros físico-químicos del agua. Para ello se toman muestras de agua y se analiza el oxígeno en disolución y la temperatura.
Y después se filtra el agua para el estudio del plancton.
INSTITUTO DE INVESTIGACIÓN Y FORMACIÓN AGRARIA Y PESQUERA
Con objetivo de contribuir a la modernización y mejora de la competitividad de los sectores pesquero y acuícola andaluz, el Centro desarrolla una importante labor de investigación y desarrollo tecnológico en el área de Cultivos marinos y recursos pesqueros.
RECORRIDO POR EL CENTRO DE INVESTIGACIÓN
Recepción
Información del Centro:
La actividad se centra en las siguientes líneas de trabajo:
Acuicultura. En el año 2002 se iniciaron los primeros estudios sobre las posibilidades acuícolas de nuevas especies, desde entonces se ha consolidado el grupo de acuicultura de peces planos, obteniendo resultados prometedores en el cultivo de la acedía (Dicologoglossa cuneata). Igualmente se trabaja en el estudio de la reproducción y desarrollo larvario de cefalópodos, habiéndose establecido relaciones de colaboración con varias universidades con intereses similares.
Patología. Su actividad está asociada al área acuícola, abordando el estudio de las alteraciones patológicas relacionadas con los cultivos desarrollados en el centro.
Recursos marinos y procesos oceanográficos costeros. Su objetivo es conocer la dinámica oceanográfica y de las poblaciones marinas, con el fin de mejorar la gestión de las poblaciones naturales.
Determinación de la calidad de las aguas, con objeto de realizar el seguimiento de la calidad del agua utilizada en las actividades del centro.(www.juntadeandalucia.es/agriculturaypesca/ifapa/web/personas-estructuras-y-servicios/centros-ifapa/centro-ifapa-agua-del-pino)
Laboratorio de Patología
En el laboratorio nos enseñan las líneas de investigación:
– Mantenimiento en cautividad de la Nacra (Pinna nobilis)
– Cultivo de la almeja fina (Ruditapes decussata)
– Cangrejo parásito de bivalvos (Afropinnotheres monodi).
Explican los procedimientos de investigación:
Para la determinación de patógenos utilizan distintas técnicas como son los cultivos en placa petri con distintos medios, pruebas bioquímicas, estudios histológicos y biología molecular:
Laboratorio de algas
Explican el procedimiento del cultivo de las microalgas. Se aísla una especie concreta en un medio de agar en placas petris.
A continuación se pasa el cultivo a tubos de ensayos.
A partir de este cultivo, se siembra en erlenmeyer y matraces para pasar posteriormente a grandes bolsas.
El color indica la densidad de población de microalgas y por él, se determina cuando está listo para utilizarlo como alimento.
Para realizar el cultivo el agua debe ser estéril y hay que añadir los micronutrientes necesarios.
Tubos de ensayos y erlenmeyers preparados para sembrar:
Matraces y erlenmeyer sembrados, a partir de éstos se siembran las bolsas.
Sala de Bivalvos
Se cultivan almejas y ostras.
Se inicia con la inducción a la puesta, que se realiza normalmente, con un choque térmico, en el que se aumenta de 20º a 23-24ºC el agua donde se encuentran los reproductores. Con ésto se consigue que la hembra ponga los huevos y el macho expulse los espermatozoides y se produzca la fecundación en el medio.
Después de la fecundación, se recogen los huevos que inician el desarrollo de embrionario, y se recogen en estadio de larvas veliger que son plantónicas y se mantienen hasta las larvas D, en las que se cambian de contenedores ya que empieza la fijación al medio y pasan a ser bentónicas. A partir de aquí se consideran postlarvas. Y continúan el desarrollo hasta la fase de semillas, las cuales ya se podrían poner en el medio para las repoblaciones.
La alimentación se realiza con las microalgas cultivadas
Las etapas del cultivo mencionadas serían:
Primero la inducción a a puesta:
Segundo, recogida de los huevos y se mantienen hasta postlarvas:
A partir de las postlarvas, que ya presentan sifón en el caso de las almejas, se recogen las semillas
A medida que van creciendo las semillas se van desdoblando en los tanques de cultivos:
Taller de bivalvos
Se tratan los siguientes temas:
– Variabilidad de bivalvos
– Alimentación
– Distribución de bivalvos en el medio
– Estudio de la disposición de las valvas
Nos enseñan a distinguir las valvas derecha de la izquierda. Siempre la charnela hacia arriba. En el caso de la almeja hay que buscar la impresión de la cavidad paleal, y se coloca la salida de sifones hacia la zona posterior. En el caso del mejillón, hay que disponer el biso hacia abajo y también la marca del músculo aductor más posterior. Y en el caso de las ostras, que no tienen sifones ni biso, hay que fijarse en la impresión del músculo aductor.
– Anatomía de los bivalvos
Cultivo de peces
Se cultivan doradas, lubinas y lenguados.
Nos explican el cultivo de los peces, desde el mantenimiento los reproductores hasta la obtención de ejemplares que se pueden liberar al medio para las repoblaciones.
Nos cuentan que el mayor inconveniente del cultivo es el estrés que sufren los ejemplares en cautividad.
Taller de peces
Nos enseñan a hacer un muestreo.
Lo primero es anestesiar a los peces para poder trabajar con ellos. Una vez dormidos hay que tallarlos y pesarlos.
Una vez terminado se devuelven al tanque de recuperación.
Artes de pesca
Por último nos explican los artes de pesca, tanto de a pie como de embarcaciones
